Основою створення вихідного матеріалу для селекції рослин є мутаційна мінливість. Метод індукованого мутагенезу дає змогу розширювати генетичну різноманітність видів з метою залучення в селекційний процес зразків із мутаціями генів і хромосом. Iндуковані мутанти, отримані в результаті обробки різноманітними мутагенними агентами, в подальшому можуть стати новими сортами після ретельного добору або залучення до гібридизації. Встановлено, що обробка новими хімічними мутагенами серії ДГ — похідними диметилсульфату (ДМС) — привела до отримання широкого спектра морфологічних і фізіологічних мутацій, які були розділені на п’ять груп. Описано частоту індукування мутацій і спрямованість дії мутагенів серії ДГ порівняно з вихідною сполукою і добре відомим мутагеном етилметансульфонатом (ЕМС). Мутагени серії ДГ значно перевершували вихідний мутаген ДМС за частотою індукованих змін, що підтвердило їх ефективність. Iз мутагенів серії ДГ найефективнішим для отримання мутацій з порушенням синтезу хлорофілу виявився мутаген ДГ-9, для мутацій структури стебла, пагонів і листків — мутагени ДГ-7, ДГ-6, мутацій забарвлення пелюсток віночка і пиляків, забарвлення насіння, а також мутацій за фізіологічними ознаками росту і розвитку — мутаген ДГ-2.
Ключові слова: льон, мутагенез, хімічний мутаген, диметилсульфат, этилметансульфонат, мутація
Повний текст та додаткові матеріали
У вільному доступі: PDFЦитована література
1. Gaevsky, N.A. (2002). Acquaintance with evolutionary genetics. Krasnoyarsk: State. Un-t [in Russian].
2. Korolev, K.P., Bogdan, V.Z. & Bogdan, T.M. (2016). Induced mutagenesis of flax (Linum usitatissimum L.) as a method of creating a new source material for priority directions in breeding. Bulletin of the Belorussian State Agricultural, 4, pp. 73-75 [in Russian].
3. Krotova, L.A. (2015). Chemical mutagenesis as a method of creating the initial material for the selection of soft wheat. Electronic scientific-methodical journal of the Omsk State Agrarian University, 2, No. 2, pp. 13-17 [in Russian].
4. Kudina, A.G. (2006). Chemical mutagens in the breeding of ornamental plants. Industrial Botany, 6, pp. 116-120 [in Russian].
5. Lazareva, N.V. & Levina E.N. (1976). Hazardous substances in industry. Vol. 2. Leningrad: Chemistry [in Russian].
6. Lebedeva, O.N., Nikolaevskaya, T.S. & Titov, A.F. (2009). The load of pigment mutations and the survival of plants in the progenies of Festuca pratensis Huds., formed on a mutant basis. Proceedings of the Karelian Research Center of the Russian Academy of Sciences, 3, pp. 56-66 [in Russian].
7. Littl, T.M. & Hills, F.D. (1981). Agricultural experimental business. Planning and analysis. Moscow: Kolos [in Russian].
8. Lyakh, V.A., Polyakova, I.A. & Soroka, A.I. (2009). Induced mutagenesis of oilseeds. Zaporozhye: Zap. Nat. Un-t [in Russian].
9. Morgun, V.V. & Logvinenko, V.F. (1995). Mutational breeding of wheat. Kiev: Nauk. dumka [in Russian].
10. Tigova, A.V. & Soroka, A.I. (2016). Influence of new chemical mutagens on plants of Linum humile Mill. in the M1 generation. Bulletin of Zaporozhye State University. Biological Sciences, 1, pp. 15-22.
11. Tigova, A.V. & Soroka, A.I. (2016). Variation of some morphometric characteristics in Linum humile Mill. under the action of new chemical mutagens in the M1 generation. Bulletin of the Institute of Oilseeds crops of the USSR, 22, pp. 35-42 [in Russian].
12. Tigova, A.V. & Soroka, A.I. (2017). Frequency and spectrum of mutations in flax (Linum humile Mill.) under the action of new dimethyl sulfate derivatives. Fiziol. rast. genet., 49, No. 6, pp. 521-532 [in Russian].
13. Deepthi, T. & Remesh, K. (2016). Impact of EMS induction on morphological, anatomical and physiological traits of Bhindi Abelmoschus esculentus (L.) Moench, International Journal of Recent Research in Life Sciences (IJRRLS), 3, pp. 4-11.
14. Kharkwal, M.C., Pandey, R.N. & Pawar, S.E. (2004). Mutation breeding for crop improvement. In Plant Breeding: Mendelian to Molecular Approaches (pp. 601-645), Dordrecht. https://doi.org/10.1007/978-94-007-1040-5_26
15. Luan, Y., Zhang, J., Gao, X. & An, L. (2007). Mutation induced by ethylmethanesulphonate (EMS), in vitro screening for salt tolerance and plant regeneration of sweet potato (Ipomoea batatas L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 88 (1), pp. 77-81. doi: https://doi: 10.1007/s11240-006-9183-2. https://doi.org/10.1007/s11240-006-9183-2
16. Mahla, H., Shekhawat, A. & Kumar, D. (2010). A study on EMS and gamma mutagenesis of clusterbean (Cyamopsis tetragonoloba (L.) Taub.). Plant Mutation Reports, 2, No. 2, pp. 28-32.
17. Rajarajan, D., Saraswathi, R., Sassikumar, D. & Ganesh, S. (2014). Fixation of lethal dose and effect of ethyl methane sulphonate induced mutagenesis in rice Adt (R) 47. Life Sciences Leaflets, 57, pp. 65-72.
18. Talebi, A., Talebi, Am. & Shahrokhifar, B. (2012). Ethyl methane sulphonate (EMS) induced mutagenesis in malaysian rice (cv. MR219) for lethal dose determination. Am. J. of Plant Sci., 3, pp. 1661-1665. doi: https://doi: 10.4236/ajps.2012.312202 https://doi.org/10.4236/ajps.2012.312202
19. Tejklova, E. (2002). Curly stem — an induced mutation in flax (Linum usitatissimum L.). Czech J. Genet. Plant Breed, 38, No. 3-4, pp. 125-128. doi: https://doi.org/ 10.17221/6246-CJGPB
20. Wasserman, L. (2005). All of Statistics: A Concise Course in Statistical Inference. Springer.