Проведено лабораторну діагностику високодекоративних аборигенних видів флори Білорусі на стійкість до хлоридного засолення. Об’єктами еколого-ботанічного аналізу ділянок придорожньої рослинності з різним рівнем засолення були 9 таксонів. У ході досліджень вивчено дію різних концентрацій хлориду натрію на проростання і морфогенез обраних об’єктів за пророщування у чашках Петрі та на живильному середовищі в умовах in vitro. Відсоток пророслого насіння і ростові показники аналізували на 4-, 8-, 14-ту доби після замочування в розчинах хлориду натрію з концентраціями 5, 10, 20, 50 г/л. Найстійкішими до засолення виявилися деревій звичайний, волошка лучна і коров’як чорний. Для цих таксонів показник схожості знижувався не більш як на 15 % на 14-ту добу експерименту. Буквиця лікарська, свербіжниця польова і підмаренник жовтий виявилися найчутливішими до впливу хлоридного засолення. Смілка звичайна, роман фарбувальний і роман польовий були середньостійкими до засолення в умовах експерименту. В більшості випадків за наявності хлориду натрію в концентрації 5 г/л середня довжина коренів скорочувалась на 50—60 %, для смілки — не більш як на 30 %. Достовірних відмінностей середньої довжини пагона при засоленні 5 г/л порівняно з контролем не виявлено. Культура in vitro може бути зручним інструментом для лабораторної діагностики стійкості рослин до засолення при проростанні.
Ключові слова: Betonica officinalis, Centaurea jacea, Verbascum nigrum, Knautia arvensis, Galium verum, Anthemis tinctoria, Anthemis arvensis, Viscaria vulgaris, Achillea millefollium, хлоридне засолення, аборигенна флора, озеленення, in vitro
Повний текст та додаткові матеріали
У вільному доступі: PDFЦитована література
1. Alam, H., Jabar, Z., Khattak, K., Sh. Babu Thru, P. & Sh. Kurup, T. (2017). Landscaping with native plants in the UAE: A review. Emirates Journal of food and agriculture, 29, No. 10, pp. 729-741. https://doi.org/10.9755/ejfa.2017.v29.i10.319
2. Burghardt, K.T., Tallamy, D.W. & Shriver, W.G. (2009). Impact of native plants on bird and butterfly biodiversity in suburban landscapes. Conserv Biol., 23, No. 1, pp. 219-224. https://doi.org/10.1111/j.1523-1739.2008.01076.x
3. Fiedler, A.K. & Landis, D.A. (2007). Attractiveness of Michigan native plants to arthropod natural enemies and herbivores. Environ Entomol., 36, No. 4, pp. 751-765. https://doi.org/10.1093/ee/36.4.751
4. Hladkov, E.A., Dolhykh, Yu.Y. & Byriukov, V.V. (2003). Otbor soleustojchivykh gazonnykh trav s pomoshch'yu metodov biotekhnologii. Biotekhnologiya, 5, pp. 11-15 [in Russian].
5. Yakovlev, A.P., Shobanova, Y.A., Bozhko, L.A. & Bulavko, H.Y. (2008). Vliyanie ostatochnykh kolichestv protivogololednykh materialov na fiziologo-biokhimicheskie pokazateli drevesno-kustarnikovykh rastenij. Ksenobiotiki i zhivye sistemy: Materialy III Mezhdunarodnoj nauchnoj konferencii. pp. 172-174 (Minsk, October 22-24, 2008) [in Russian].
6. Sushkov, O.S. (2016). Strategyia ozelenenyia avtomagystralei v uslovyiakh prymenenyia protivohololednykh sredstv v zimnee vremia goda. Voronezhskii nauchno-tekhnycheskii vestnik, No. 4 (18), pp. 73-80 [in Russian].
7. Khalid, K.A. & Cai, W. (2011). The effects of mannitol and salinity stresses on growth and biochemical accumulations in lemon balm. Acta Ecologica Sinica, 31, No. 2, pp. 112-120. https://doi.org/10.1016/j.chnaes.2011.01.001
8. Kaya, M.D., Ok¸u, G., Atak, M., ÏkÏlÏ, Y. & KolsarÏcÏ, . (2006). Seed treatments to overcome salt and drought stress during germination in sunflower (Helianthus annuus L.). Eur. J. Agron., 24, pp. 291-295. https://doi.org/10.1016/j.eja.2005.08.001
9. Alrahman, N.M., Shibli, R.A., Ereifej, Khalil & Hindiyeh, Muna (2005). Influence of salinity on growth and physiology of in vitro grown cucumber (Cucumis sativus L.). Jordan Journal of Agricultural Sciences, 1, No. 1, pp. 93-105.
10. Morales, M., Olmos, E., Torrecillas, A., Sanchez-Blanco, M.J. & Alarcon, J. (2001). Differences in water relations, leaf ion accumulation and excretion rates between cultivated and wild species of Limonium sp. grown in conditions of saline stress. Flora, 196, No. 5, pp. 345-352. https://doi.org/10.1016/S0367-2530(17)30070-1
11. Katembe, W.J., Ungar, I.A & Mitchell, J.P. (1998). Effect of salinity on germination and seedling growth of two Atriplex species (Chenopodiaceae). Ann. Bot., 82, pp. 167-175. https://doi.org/10.1006/anbo.1998.0663
12. Belozerova, A.A. & Bome, N.A. (2014). Izuchenie reakcii yarovoj pshenicy na zasolenie po izmenchivosti morfometricheskikh parametrov prorostkov. Fundamentalnye issledovaniya, N 12 (2), pp. 300-306 [in Russian]. https://doi.org/10.1097/01.WTF.0000452101.84948.8a
13. Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant, 15, No. 3, pp. 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x